二十二碳六烯酸(DHA)是維持人體正常生長(zhǎng)發(fā)育的重要成分。DHA作為人體必需不飽和脂肪酸,不能在人體內(nèi)直接合成,只能從飲食中攝取。隨著微藻源DHA在食品添加中的普遍應(yīng)用,微藻源DHA的質(zhì)量安全也逐漸受到消費(fèi)者的關(guān)注。雖然有關(guān)DHA的研究報(bào)道和商業(yè)產(chǎn)品層出不窮,但目前市場(chǎng)上尚未生產(chǎn)出檢測(cè)微藻源DHA含量的金標(biāo)快速檢測(cè)產(chǎn)品。為此,本課題在參考前人研究半抗原偶聯(lián)技術(shù)、抗體制備技術(shù)等基礎(chǔ)上,研究制備微藻源DHA偶聯(lián)抗原和抗體。并對(duì)DHA抗原抗體在膠體金免疫層析技術(shù)上的應(yīng)用進(jìn)行初步探討。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)碳化二亞胺活性酯法和混合酸酐法,合成免疫抗原DHA-BSA和包被抗原DHA-OVA。通過(guò)蛋白電泳、紅外光譜掃描、紫外光譜掃描分析,半抗原DHA與載體蛋白BSA、OVA偶聯(lián)成功,且免疫抗原的偶聯(lián)比為4:1和17:1,在適宜的偶聯(lián)比范圍內(nèi)。用免疫抗原對(duì)Balb/c小鼠進(jìn)行四次免疫,并取血清進(jìn)行效價(jià)檢測(cè)。最終選用20μg/ml的包被抗原進(jìn)行包被,5%脫脂奶粉進(jìn)行封閉,測(cè)得多抗血清效價(jià)為128000。通過(guò)阻斷ELISA測(cè)定,DHA抗體的敏感性IC50為40.44μg/ml。用蛋白純化柱Protein G對(duì)抗體進(jìn)...

【文章頁(yè)數(shù)】：77 頁(yè)

【學(xué)位級(jí)別】：碩士

【文章目錄】：
摘要
Abstract
第一章 緒論
    1.1 課題研究背景
    1.2 DHA概述
        1.2.1 DHA簡(jiǎn)介
        1.2.2 DHA的來(lái)源
        1.2.3 DHA的生理功能
        1.2.4 DHA的應(yīng)用及添加量
        1.2.5 常用檢測(cè)方法
            1.2.5.1 氣相色譜法(GC)
            1.2.5.2 氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法(GC-MS)
            1.2.5.3 高效液相色譜法(HPLC)
    1.3 人工抗原合成方法及其原理
        1.3.1 人工抗原簡(jiǎn)介
        1.3.2 載體的選擇
        1.3.3 偶聯(lián)方法的選擇
    1.4 膠體金免疫層析技術(shù)概述
        1.4.1 膠體金及其制備
        1.4.2 膠體金免疫層析技術(shù)及其原理
        1.4.3 膠體金免疫層析技術(shù)分類
            1.4.3.1 間接法制備膠體金免疫層析試紙條
            1.4.3.2 競(jìng)爭(zhēng)法制備膠體金免疫層析試紙條
            1.4.3.3 夾心法制備膠體金免疫層析試紙條
        1.4.4 膠體金免疫層析技術(shù)在食品安全檢測(cè)中的應(yīng)用
            1.4.4.1 農(nóng)藥獸藥殘留檢測(cè)
            1.4.4.2 病原微生物的檢測(cè)
            1.4.4.3 食品中其他小分子物質(zhì)的檢測(cè)
        1.4.5 膠體金免疫層析技術(shù)的發(fā)展趨勢(shì)
    1.5 本課題研究目的及意義、研究?jī)?nèi)容和創(chuàng)新之處
        1.5.1 本課題研究目的及意義
        1.5.2 本課題主要研究?jī)?nèi)容
        1.5.3 本課題創(chuàng)新之處
        1.5.4 課題研究的技術(shù)路線
第二章 材料與方法
    2.1 實(shí)驗(yàn)儀器設(shè)備
    2.2 實(shí)驗(yàn)材料及試劑
        2.2.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
        2.2.2 實(shí)驗(yàn)試劑耗材
        2.2.3 實(shí)驗(yàn)耗材
        2.2.4 實(shí)驗(yàn)所需試劑的配制
            2.2.4.1 DHA人工抗原制備及鑒定所需溶液的配制
            2.2.4.2 抗體純化鑒定所需溶液的配制
            2.2.4.3 金標(biāo)檢測(cè)卡所需溶液的配制
    2.3 實(shí)驗(yàn)方法
        2.3.1 DHA人工抗原的制備及其鑒定
            2.3.1.1 免疫抗原(DHA-BSA)的制備
            2.3.1.2 包被抗原(DHA-OVA)的制備
            2.3.1.3 DHA人工抗原的鑒定
        2.3.2 DHA抗體的制備
            2.3.2.1 小鼠免疫
            2.3.2.2 血清效價(jià)檢測(cè)
            2.3.2.3 細(xì)胞融合
            2.3.2.4 雜交瘤細(xì)胞篩選
        2.3.3 DHA抗體的純化與鑒定
            2.3.3.1 抗體純化
            2.3.3.2 抗體濃度測(cè)定
            2.3.3.3 SDS-PAGE蛋白電泳檢測(cè)
        2.3.4 膠體金的制備及其表征研究
            2.3.4.1 膠體金的制備
            2.3.4.2 膠體金制備影響因素的測(cè)定
            2.3.4.3 膠體金鑒定
        2.3.5 DHA金標(biāo)檢測(cè)卡的初步探究
            2.3.5.1 金標(biāo)記抗體的制備
            2.3.5.2 金標(biāo)記抗體的穩(wěn)定性
            2.3.5.3 金標(biāo)記抗體效果的鑒定
            2.3.5.4 金標(biāo)檢測(cè)卡的組裝及性能測(cè)試
第三章 結(jié)果與討論
    3.1 免疫抗原的鑒定與分析
        3.1.1 蛋白電泳鑒定
        3.1.2 紅外掃描鑒定
        3.1.3 紫外全波長(zhǎng)掃描
        3.1.4 免疫抗原偶聯(lián)比測(cè)定
    3.2 抗體的制備與鑒定
        3.2.1 多克隆抗體效價(jià)檢測(cè)
            3.2.1.1 包被濃度的確定
            3.2.1.2 封閉液的選擇
            3.2.1.3 抗血清效價(jià)的檢測(cè)
            3.2.1.4 競(jìng)爭(zhēng)抑制的測(cè)定
        3.2.2 單克隆抗體的制備與測(cè)定
            3.2.2.1 細(xì)胞融合
            3.2.2.2 雜交瘤細(xì)胞的檢測(cè)與篩選
        3.2.3 抗體的純化及鑒定
            3.2.3.1 抗體純化前后濃度測(cè)定
            3.2.3.2 抗體純度測(cè)定
    3.3 膠體金的制備及表征研究
        3.3.1 檸檬酸三鈉添加量對(duì)膠體金溶液的影響
            3.3.1.1 檸檬酸三鈉對(duì)膠體金溶液表觀狀態(tài)的影響
            3.3.1.2 膠體金溶液的可見光光譜分析
            3.3.1.3 膠體金顆粒大小的選擇
        3.3.2 K₂CO₃添加量對(duì)膠體金溶液的影響
            3.3.2.1 K₂CO₃添加量對(duì)膠體金表觀特征的影響
            3.3.2.2 膠體金溶液的可見光譜分析
    3.4 DHA金標(biāo)檢測(cè)卡的初步探究
        3.4.1 金標(biāo)抗體的制備
            3.4.1.1 膠體金標(biāo)記抗體最適pH的確定
            3.4.1.2 最適抗體標(biāo)記量的確定
        3.4.2 金標(biāo)記抗體效果的鑒定
        3.4.3 DHA金標(biāo)檢測(cè)卡的組裝及性能測(cè)試
結(jié)論與展望
    結(jié)論
    展望
參考文獻(xiàn)
致謝
個(gè)人簡(jiǎn)歷
研究成果



本文編號(hào)：3921967