發(fā)布時(shí)間：2024-07-05 21:28

　　海藻糖因其獨(dú)特的生物學(xué)特性,具有保護(hù)生物大分子生命體特征的功能,被廣泛用于食品、藥品和化妝品中。目前,被廣泛認(rèn)可的海藻糖制備工藝是單酶法。單酶法是在海藻糖合酶(TreS)的作用下,直接將麥芽糖轉(zhuǎn)化為海藻糖。轉(zhuǎn)化過(guò)程相對(duì)簡(jiǎn)單,方便操作,但該方法依然存在不足,一是TreS主要由重組大腸桿菌誘導(dǎo)表達(dá)獲得;二是胞內(nèi)表達(dá),獲得TreS需高壓均質(zhì)破碎,能耗高,設(shè)備投資大,且產(chǎn)品中易殘留內(nèi)毒素。針對(duì)上述兩點(diǎn),本論文開(kāi)展了以下研究工作:(1)選取密度誘導(dǎo)型啟動(dòng)子P_srfA、組成型啟動(dòng)子P₄₃和四個(gè)時(shí)期特異性啟動(dòng)子P_abrB、P_spoVG、P_LytR、P_mmgA為表達(dá)元件,四個(gè)時(shí)期特異性啟動(dòng)子分別在細(xì)胞生長(zhǎng)對(duì)數(shù)期、穩(wěn)定期前期、穩(wěn)定期和衰亡期表達(dá),將其串聯(lián)構(gòu)建得到新的啟動(dòng)子P_{abrB-spoVG-LytR-mmgA},以pHT01質(zhì)粒為表達(dá)載體,構(gòu)建了自誘導(dǎo)表達(dá)海藻糖合酶的重組枯草芽孢桿菌,并將重組菌分別在搖瓶和發(fā)酵罐中發(fā)酵驗(yàn)證,得到表達(dá)酶活高的重組菌B....

【文章頁(yè)數(shù)】：84 頁(yè)

【學(xué)位級(jí)別】：碩士

【文章目錄】：
摘要
ABSTRACT
第1章 緒論
    1.1 海藻糖概述
        1.1.1 海藻糖的特征
        1.1.2 海藻糖的功能與應(yīng)用
        1.1.3 海藻糖主要的制備方式
    1.2 海藻糖合酶概述
        1.2.1 海藻糖合酶的特征
        1.2.2 海藻糖合酶的作用機(jī)理
        1.2.3 海藻糖合酶的研究進(jìn)展
    1.3 枯草芽孢桿菌表達(dá)系統(tǒng)
    1.4 枯草芽孢桿菌調(diào)控表達(dá)啟動(dòng)子
    1.5 枯草芽孢桿菌蛋白分泌
    1.6 課題的立題背景和研究?jī)?nèi)容
        1.6.1 立題背景
        1.6.2 研究?jī)?nèi)容
第2章 海藻糖合酶在枯草芽孢桿菌中的胞內(nèi)表達(dá)
    2.1 引言
    2.2 實(shí)驗(yàn)材料
        2.2.1 主要試劑
        2.2.2 儀器與設(shè)備
        2.2.3 主要培養(yǎng)基和溶液
        2.2.4 主要菌株、質(zhì)粒和引物
    2.3 實(shí)驗(yàn)方法
        2.3.1 目的基因片段的獲取
        2.3.2 重組表達(dá)載體的構(gòu)建
            2.3.2.1 pHT01-P_srfA-treS表達(dá)載體的構(gòu)建
            2.3.2.2 pHT01-P₄₃-treS表達(dá)載體的構(gòu)建
            2.3.2.3 pHT01-P_{abrBspoVG-LytR-mmgA}-treS表達(dá)載體的構(gòu)建
            2.3.2.4 基因片段的擴(kuò)增
            2.3.2.5 重疊片段P_srfA-treS與表達(dá)質(zhì)粒pHT01雙酶切
            2.3.2.6 片段P_srfA-treS與質(zhì)粒pHT01的連接
        2.3.3 枯草芽孢桿菌B.subtilis WB800n感受態(tài)的制備
        2.3.4 重組B.subtilis WB800n的構(gòu)建
        2.3.5 重組枯草芽孢桿菌的表達(dá)驗(yàn)證
        2.3.6 海藻糖合酶的酶活力分析
    2.4 結(jié)果與討論
        2.4.1 基因的克隆
            2.4.1.1 P_srfA和treS基因片段的克隆
            2.4.1.2 P₄₃和treS-1基因片段的克隆
            2.4.1.3 P_{abrB-spoVG-LytR-mmgA}和treS-1基因片段的克隆
        2.4.2 表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建
            2.4.2.1 質(zhì)粒pHT01-P_srfA-treS的構(gòu)建
            2.4.2.2 質(zhì)粒pHT01-P₄₃-treS的構(gòu)建
            2.4.2.3 質(zhì)粒pHT01-P_{abrBspoVG-LytR-mmgA}-treS的構(gòu)建
        2.4.3 胞內(nèi)表達(dá)重組枯草芽孢桿菌的的構(gòu)建
            2.4.3.1 重組菌B.subtilis WB800n/pHT01-P_srfA-treS的構(gòu)建
            2.4.3.2 重組菌B.subtilis WB800n/pHT01-P₄₃-treS的構(gòu)建
            2.4.3.3 重組菌B.subtilis WB800n/pHT01-P_{abrBspoVG-LytR-mmgA}-treS的構(gòu)建
    2.5 重組菌發(fā)酵產(chǎn)酶驗(yàn)證
        2.5.1 重組枯草芽孢桿菌的搖瓶發(fā)酵產(chǎn)酶分析
        2.5.2 重組枯草芽孢桿菌在SL發(fā)酵罐中發(fā)酵產(chǎn)酶比較
    2.6 SDS-PAGE蛋白電泳分析
    2.7 本章小結(jié)
第3章 海藻糖合酶在枯草芽孢桿菌中的分泌表達(dá)
    3.1 引言
    3.2 實(shí)驗(yàn)材料
        3.2.1 主要試劑
        3.2.2 主要儀器
        3.2.3 主要培養(yǎng)基和溶液
        3.2.4 主要菌株、質(zhì)粒和引物
    3.3 實(shí)驗(yàn)方法
        3.3.1 目的基因片段的克隆
        3.3.2 分泌表達(dá)載體的構(gòu)建
            3.3.2.1 pHT01-P_srfA-PhoD/YwbN-treS表達(dá)載體的構(gòu)建
            3.3.2.2 pHT01-P₄₃-PhoD/YwbN-treS表達(dá)載體的構(gòu)建
            3.3.2.3 pHT01-P_{abrB-spoVG-LytR-mmgA}-PhoD/YwbN-treS表達(dá)載體的構(gòu)建
        3.3.4 免疫印跡(Western-blot)分析
    3.4 結(jié)果與討論
        3.4.1 基因的克隆
            3.4.1.1 P_srfA、PhoD、YwbN和treS基因片段的擴(kuò)增
            3.4.1.2 P₄₃、PhoD、YwbN和treS基因片段的擴(kuò)增
            3.4.1.3 P_{abrB-spoVG-LytR-mmgA}、PhoD、YwbN和treS兩個(gè)片段的擴(kuò)增
        3.4.2 表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建
            3.4.2.1 質(zhì)粒pHT01-P_srfA-PhoD/YwbN-treS的構(gòu)建
            3.4.2.2 質(zhì)粒pHT01-P₄₃-PhoD/YwbN-treS的構(gòu)建
            3.4.2.3 質(zhì)粒pHT01-P_{abrB-spoVG-LytR-mmgA}-PhoD/YwbN-treS的構(gòu)建
        3.4.3 分泌表達(dá)重組枯草芽孢桿菌的的構(gòu)建
            3.4.3.1 重組菌B.subtilis/pHT01-P_srfA-PhoD/YwbN-treS的構(gòu)建
            3.4.3.2 重組菌B.subtilis/pHT01-P₄₃-PhoD/YwbN-treS的構(gòu)建
            3.4.3.3 重組菌B.subtili/pHT01-P_{abrB-spoVG-LytR-mmgA}-PhoD/YwbN-treS的構(gòu)建
    3.5 重組菌發(fā)酵產(chǎn)酶驗(yàn)證
        3.5.1 分泌型重組枯草芽孢桿菌在5L發(fā)酵罐中發(fā)酵產(chǎn)酶比較
    3.6 免疫印跡(Western-blot)分析
    3.7 本章小結(jié)
第4章 重組枯草芽孢桿菌的發(fā)酵優(yōu)化
    4.1 引言
    4.2 實(shí)驗(yàn)材料
        4.2.1 實(shí)驗(yàn)菌株
        4.2.2 儀器設(shè)備
        4.2.3 實(shí)驗(yàn)藥品
        4.2.4 主要試劑與培養(yǎng)基配制
    4.3 實(shí)驗(yàn)方法
        4.3.1 菌株活化及酶活力測(cè)定
        4.3.2 磷酸鹽濃度對(duì)酶活的影響
        4.3.3 碳源對(duì)酶活的影響
        4.3.4 碳源濃度對(duì)酶活的影響
        4.3.5 添加金屬離子對(duì)酶活的影響
        4.3.6 不同pH對(duì)酶活的影響
        4.3.7 發(fā)酵后期降低溫度對(duì)酶活的影響
        4.3.8 流加不同濃度蔗糖對(duì)酶活的影響
    4.4 結(jié)果與討論
        4.4.1 磷酸鹽濃度對(duì)酶活的影響
        4.4.2 碳源及碳源濃度對(duì)酶活的影響
        4.4.3 添加金屬離子對(duì)酶活的影響
        4.4.4 不同pH對(duì)酶活的影響
        4.4.5 發(fā)酵后期降低溫度對(duì)酶活的影響
        4.4.6 流加不同濃度蔗糖對(duì)酶活的影響
    4.5 本章小結(jié)
第5章 總結(jié)與展望
    5.1 總結(jié)
    5.2 展望
參考文獻(xiàn)
致謝
在學(xué)期間主要科研成果



本文編號(hào)：4001559